Achmann, R.; Curik, I.; Dovc, P.; Kavar, T.; Bodo, I.; Habe, F.; Marti, E.;
Sölkner, J.; Brem, G. (2004): Microsatellite diversity, population subdivision and gene flow in the Lipizzan horse. Animal Genetics. 35. 285-292.
Achmann, R.; Wallner, B.; Schwend, K.; Traxler, B; Müller, S.;
Nechtelberger, D.; Müller, M.; Brem, G. (2000): Abstammungsüberprüfung bei Nutztieren mit Hilfe der Analyse von DNA Mikrosatelliten Markern. In:
GRADUIERTENKOLLEG MOLEKULARE VETERINARMEDIZIN
JUSTUS LIEBIG-UNIVERSITAT GIESSEN (Hrsg.) (2000): PCR Methoden und Anwendungen. Fachverlag Kohler, Giessen, S. 23-33.
Alderson G. L. (1989): The chance to survive A.H. Jolly Ltd Yelvertoft Manor Northamptonshire 143.
Arranz, J. J.; Bayón, Y.; San Primitivo, F. (1998): Genetic relationships among Spanish sheep using microsatellites. Animal Genetics. 29. 435-440.
Avery, O. T.; MacLeod, C. M.; McCarty, M (1944): Studies of the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types.
Induction of transformation by a deoxyribonucleic acid fraction isolated from pneumococcus type III. J. Exp. Med. 79. 137-158.
Barendse, W.; Armitage, S. M.; Kossarek, L. M.; Shalom, A.; Kirkpatrick, B.
W.; Ryan, A. M.; Clayton, D.; Li, L.; Neibergs, H. L.; Zhang, N.; Grosse, W.
M.; Weiss, J.; Creighton, P.; McCarthy, F.; Ron, M.; Teale, A. J.; Fries, R.;
McGraw, R. A.; Moore, S. S.; Georges, M.; Soller, M.; Womack, J. E.; Hetzel, D. J. S. (1994): A genetic linkage map of the bovine genome. Nature Genetics.
6. 227-235.
Baron E. E.; Martinez, M. L.; Verneque, R. S.; Coutinho, L. L. (2002):
Parentage testing and effect of misidentification on the estimation of breeding value in Gir cattle. Genet. Mol. Biol. 25. 389-394.
Bán B.; Bodó I.; Józsa Cs.; Mihók S. (2006): A mezőhegyesen kitenyésztett lófajták vércsoport, biokémiai polimorfizmus és DNS mikroszatellit vizsgálata, összehasonlításuk a hucul és az angol telivér fajtákkal (In: Génmegőrzés:
Hagyományos háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen. 44-56.
Binns, M. M.; Holmes, N. G.; Holliman, A.; Scott, A. M. (1995): The identification of polymorphic microsatellite loci in the horse and their use in Thoroughbred parentage testing. British Veterinary Journal, 151. 9-15.
Bishop M. D. ; Kappes, S. M.; Keele, J. W.; Stone, R. T.; Sunden, S. L. F.;
Hawkins, G. A.; Toldo, S.; Fries, R. T.; Grosz, M. D; Yoo, J.; Beattie, C. W.
(1994): A genetic linkage map for cattle. Genetics. 136. 619-639.
Bjornstad, G.; Gunby, E.; Roed, K. H. (2000): Genetic structure of Norwegian horse breeds. J. Anim. Breed. Genet. 117. 307-317.
Blott, S. C.; Williams, J. L.; Haley, C. S. (1998): Genetic variation within the Hereford breed of cattle. Animal Genetics. 29. 202-211.
Bodó I. (2002): A fajta és a típus szerepe a genetikai sokféleség fenntartásában. (In: Génmegőrzés: kutatási eredmények régi háziállatfajták értékeiről – Bodó Imre Professzor 70. születésnapja tiszteletére), Debreceni Egyetem, Debrecen
Bodó I. és Hecker W. (1998): Lótenyésztők kézikönyve, 123-184., Mezőgazda Kiadó, Budapest
Bowling, A. T. (1996): Horse Genetics. 82-97. CAB International, Wallingford
Breen, M.; Lindgren, G.; Binns, M. M.; Norman, J.; Irvin, Z.; Bell, K.;
Sandberg, K.; Ellegren, H. (1997): Genetical and physical assignments of
equine microsatellites-first integration of anchored markers in horse genome mapping. Mammalian Genome. 8. 267-273.
Brock, T. D. and Freeze, H. (1969): Thermus aquaticus gen.n. and sp. N., a nonsporulating extreme thermophile. Journal of Bacteriology, 98. 289-297.
Bruford, M. W. and Wayne, R. K. (1993): Microsatellites and their application to population genetic studies. Journal of Current Opinion in Genetics and Development. 3. 939-943.
Buduram, P.; van Wyck, J. B.; Kotze, A. (2005): Genetic characterization of indigenous Southern African sheep breeds using DNA markers. EAAP-56th Annual Meeting, Uppsala. 96. p.
Canon, J.; Checa, M. L.; Carleos, C.; Vega-Pla, J. L.; Vallejo, M.; Dunner, S.
(2000): The genetic structure of Spanish Celtic horse breeds inferred from microsatellite data. Animal Genetics. 31. 39-48.
Coogle, L.; Bailey, E.; Reid, R.; Russ, M. (1996): Equine dinucleotide repeat polymorphisms at loci LEX002, -003, -004, -005, -007, -008, -009, -010, -011, -013, and -014. Animal Genetics. 27. 126-127.
Cothran, E. G.; Maccluer, J. W.; Weitkamp, L. R.; Bailey, E. (1987): Genetic differentiation associated with gait within American Standardbred horses.
Animal Genetics, 18. 285-296.
Cothran, E. G. and Kovac, M. (1997): Genetic analysis of the Croatian Trakehner and Posavina horse breeds. Zivocisná Vyroba. 42. 207-212.
Craighead, L.; Paetkau, D.; Reynolds, H. V.; Vyse, E. R.; Strobeck, C. (1995):
Microsatellite analysis of paternity and reproduction in Arctic grizzly bears. J.
Hered. 86. 255-261.
Cunningham, E. P.; Dooley, J. J.; Splan, R. K.; Bradley, D. G. (2001):
Microsatellite diversity, pedigree relatedness and the contributions of founder lineages to thoroughbred horses. Animal Genetics. 32. 6: 360–364.
Curik, I.; Zechner, P.; Sölkner, J.; Achmann, R.; Bodó, I.; Dovc, P.; Kavar, T.;
Marti, E.; Brem, G. (2003): Inbreeding, Microsatellite Heterozygosity, and Morphological Traits in Lippizan Horses. Journal of Heredity. 94. (2.) 125-132.
Csontos G.; Bán B.; Flink F. (1993): Lovak származásellenőrzésének új technikái, Nemzeti Ló Szaporodásbiológiai Találkozó, Állatorvostudományi Egyetem, Budapest
Dallas, J. F. (1992): Estimation of microsatellite mutation rates in recombinant inbred strains of mouse. Mamm. Genome. 5. 32-38.
De Woody, J. A. and Avise, J. C. (2000): Microsatellite variation in marine, freshwater and anadromous fishes compared with other animals. Journal of Fish Biology. 56. 461-473.
Dieffenbach, C. W.; Lowe, T. M. J.; Dveksler, G. S. (1995): General concepts for PCR primer design. In PCR primer. A laboratory manual. CSH, 133-142.
Dimsoski, P. (2003): Development of a 17-plex microsatellite polymerase chain reaction kit for genotyping horses. Croat. Med. J. 44. 332-335.
Dohy J. (1979): Állattenyésztési genetika. Mezőgazdasági Kiadó, Budapest
Dohy J. (1999): Genetika állattenyésztőknek. Mezőgazdasági Kiadó, Budapest
Edwards, A.; Civitello, A.; Hammond, H. A.; Caskey, C. T. (1991): DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats.
American Journal of Human Genetics. 49 (4): 746-56.
Edwards, A.; Hammond, H. A.; Jin, L.; Caskey C. T.; Chakraborty, R. (1992):
Genetic variation at five trimeric and tetrameric tandem repeat loci in four human population groups. Genomics. 12. 241-253.
Eggleston-Stott, M. L.; DelValle, A.; Bautista, M.; Dileanis, S.; Wictum E.;
Bowling, A. T. (1997): Nine equine dinucleotide repeats at microsatellite loci UCDEQ136, UCDEQ405, UCDEQ412, UCDEQ425, UCDEQ437, UCDEQ467, UCDEQ487, UCDEQ502 and UCDEQ505. Aniamal Genetics.
28. 370-371.
Ellegren, H.; Johasson, M.; Sandberg, K.; Andersson, L. (1992): Cloning of highly polymorphic microsatellites in the horse. Animal Genetics, 23. 133-142.
Engelhardt, E.; Beck, W.; Schmitt, T. (1996): Capillary electrophoresis, Friedr. Vieweg & Sohn Verlagsgesellschaft mbH, Braunschweig/Wiesbaden Fésüs L. (1984): Újabb genetikai és biotechnológiai módszerek az állattenyésztésben, 7-30. Mezőgazdasági Kiadó, Budapest
Fésüs L.; Domján E.; Zsolnai A. (1997): A lovak származásellenőrzésének hazai gyakorlata és jövőbeni lehetőségei, Szaktanácsadási Füzetek, 5. 23-25., Állattenyésztési és Takarmányozási Kutatóintézet, Herceghalom
Fésüs L.; Komlósi I.; Varga L.; Zsolnai A. (2000): Molekuláris genetikai módszerek alkalmazása az állattenyésztésben. 142-172. Agroinform Kiadó és Nyomda Kft., Budapest
Flink F. és Csontos G. (1988): Hasznos tenyésztéstechnikai módszer. Lovas Magazin, 1988/1., 10-11.
Geldmann, H.; Pieper, U.; Weber, W. E. (1986): Effect of misidentification ont he estimation of breeding value and heritability in cattle. J. Anim. Sci. 63.
1759-1768.
Glaubitz, J. C. (2004): CONVERT: a user friendly program to reformat diploid genotypic data for commonly used population genetic software packages. Molecular Ecology Notes. 4. 309-310.
Glowatzki-Mullis, M. L.; Gaillard, C.; Wigger, G.; Feies, R. (1995):
Microsatellite-based parentage control in cattle. Animal Genetics. 26. 7-12.
Goudet, J. (1995): Fstat version 1.2: a computer program to calculate F statistics. Journal of Heridity. 86. 485-486.26.
Guérin, G.; Bertaud, M.; Amigues, Y. (1994): Characterization of seven new horse microsatellites: HMS1, HMS2, HMS3, HMS5, HMS6, HMS7 and HMS8. Animal Genetics, 25. 62.
Hansen, C.; Shrestha, J. N.; Parker, R. J.; Crow, G. H.; McAlpine, P. J.; Derr, J. N. (2002): Genetic diversity among Canadienne, Brown Swiss, Holstein, and Jersey cattle of Canada based on 15 bovine microsatellite markers. Genome.
45. 897-904.
Hardge, T. (1999): Untersuchungen zu den genetischen Ursachen von quantitativen Leistungsmerkmalen mittels Kandidatengenanalyse beim Schwein. Berlin. Humboldt- Universitat, Fachbereich Nutztierwissenschaften, Akadémiai disszertáció. Kézirat. 56.
Hargittai I. (2003): 50 évvel ezelőtt valami megduplázódott – A kettőscsavar felfedezésének története és tanulsága. Fizikai Szemle. 5. 157.
Hedrick, P. W. and Miller, P. S. (1992): Conservation genetics: techniques and fundamentals. Ecological Applications. 2. (1), 30-46.
Hidas A. (2002): DNS markerek vizsgálata a baromfi állományok génmegőrzésében (In: Génmegőrzés: kutatási eredmények régi háziállatfajták értékeiről – Bodó Imre Professzor 70. születésnapja tiszteletére), Debreceni Egyetem, Debrecen
Hidas A.; Sófalvy F.; Gaál K. (2006): A hagyományos tyúfajtákban rejlő genetikai variancia felmérése. 70-86. (In: Génmegőrzés: Hagyományos háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen
Innis, M. A.; Gelfand, D. H.; Sninsky, J. J.; White, T. J. (1990): PCR protocols (A Guide to Methods and Applications), 3-166. Academic Press, INC., San Diego, California
Irvin, Z.; Giffard, J.; Brandon, R.; Breen, M.; Bell, K. (1998): Equine dinucleotide repeat polymorphisms at loci ASB 21, 23, 25 and 37-43. Animal Genetics. 29. 67.
Israel, C. and Weller, J. I. (2000): Effect of misidentification on genetic gain and estimation of breeding value in dairy cattle populations. J. Dairy. Sci. 83.
181-187.
Issaq, H. J. (2000): A decade of capillary electrophoresis. Electrophoresis. 21.
1921-1939.
Jacob, H. J.; Lindpaintner, K.; Lincoln, S. E.; Kusumi, K.; Bunker, R. K.;
Mao, Yi-Pei; Ganten, D.; Dzau, V. J.; Lander, E. S. (1991): Genetic mapping of a gene causing hypertensive rat. Cell. 67. 213-224.
Jamieson, A. and Taylor St C. S. (1997): Comparison of three probability formulae for parentage exclusion. Animal Genetics. 28. 397–400.
Jeffreys, A. J.; Wilson, V.; Thein, S. L. (1985): Hypervariable ’minisatellite’
regions in human DNA. Nature. 314. 67-73.
Józsa, Cs.; Husvéth, F.; Bán, B.; Takács, E. (2006a): DNA microsatellite test of Thoroughbred and Trotter horses in Hungary (A telivér és ügető lófajták
DNS mikroszatellit vizsgálata Magyarországon). Állattenyésztés és takarmányozás. 55. 4. 313-322.
Józsa Cs., Husvéth F., Bán B., Takács E. (2006b): A telivér és ügető fajták vércsoport és biokémiai polimorf rendszerek vizsgálata (Examination of D-blood group and biochemical systems in Thoroughbred and Trotter horses).
Állattenyésztés és takarmányozás. 55. 2. 117-125.
Juras, R. and Cothran, E. G. (2004): Microsatellites in Lithuanian native horse breeds: usefulness for parentage testing. Biologija. 4. 6-9.
Kalinowski, S. T. (2004): Counting alleles with rarefaction: Private alleles and hierarchical sampling designs. Conservation Genetics. 5. 539-543.
Kalinowski, S. T.; Taper, M. L.; Marshall, T. C. (2007): Revising how the computer program CERVUS accommodates genotyping error increases success in paternity assignment. Molecular Ecology. 16. 1099-1006.
Khorana, H. G. (1968): Synthesis in the study of nucleic acids. The Fourth Jubilee Lecture. Biochem J. 1968 October; 109(5): 709–725.
Kimura, M. and Crow, J. F. (1964): The number of alleles that can be maintained in a finite population. Genetics. 49. 725-738.
Komlósi, I.; Anton, I.; Fésüs, L. (2005): Összefüggés egyes mikrosztellit markerek és a magyar merinó súlygyarapodása között. Állattenyésztés és takarmányozás. 54. 6. 521-529.
Korom, E.; Nagy, T.; Kovács, B.; Komlósi, I. (2003): Tyúk mikroszatellitek alkalmazása pulyka populáció genetikai jellemzésére. EU Konform Mezőgazdaság és Élelmiszerbiztonság II. kötet, Gödöllő. 26-31.
Kusza Sz.; Kukovics S.; Jávor A. (2006): A cigája változatok közötti genetikai távolság becslése. 64-70. (In: Génmegőrzés: Hagyományos háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen
Leberg P. L. (2002): Estimating allelic richness: effects of sample size and bottlenecks. Molecular Ecology. 11. 2445-2449.
Levene, H. (1949): On a matching problem arising in genetics. Ann. Math.
Stat. 20. 91-94.
Levinson, G. and Gutman, G. A. (1987): Slipped-strand mispairing: a major mechanism for DNA sequence evolution. Mol. Biol. Evol. 4. 203-221.
Lewontin, R. C. (1972): The apportionment of human diversity. Evol Biol. 6.
381–398.
Lindstedt, B. A.; Heir, E.; Vardund, T.; Kapperud, G. (2000): Fluorescent Amplified-Fragment Lenght Polymorphism Genotyping of Salmonella enterica subsp. enterica Serovars and Comparison with Pulsed-Field Gel Electrophoresis Typing. Journal of Clinical Microbiology. 38. 1623-1627.
Litt, M. and Luty, J. A. (1989): A hypervariable microsatellite revealed by in vitro amplification of a dinucleotide repeat within the cardiac muscle actin gene. American Journal of Human Genetics. 44. (3): 397–401.
Loftus, R. T.; Ertugrul, O.; Harba, A. H.; El Barody, M. A.; MacHugh, D. E.;
Park, S. D.; Bradley, D. G. (1999): A microsatellite survey of cattle from a centre of origin: the Near East. Mol. Ecol. 8. 2015-2022.
Luís, C.; Cothran, E. G.; Oom, M. M. (2002): Microsatellites in Portuguese autochthonous horse breeds: usefulness for parentage testing. Genetics and Molecular Biology. 25. 2: 131-134.
Machado, M. A.; Schuster, I.; Martinez, M. L.; Campos, A. L. (2003): Genetic diversity of four cattle breeds using microsatellite markers. R. Bras. Zootec. 32.
1: 93-98.
MacHugh, D. E.; Shriver, M. D.; Loftus, R. T.; Cunningham, P.; Bradley, D.
G. (1997): Microsatellite DNA variation and the evolution, domestication and phylogeography of taurine and zebu cattle (Bos taurus and Bos indicus).
Genetics. 146. 1071-1086.
MacHugh, D. E.; Loftus, R. T.; Cunningham, P.; Bradley, D. G. (1998):
Genetic structure of seven European cattle breeds assessed using 20 microsatellite markers. Animal Genetics. 29. 333-340.
MacHugh, D. E.; Loftus, R. T.; Bradley, D. G.; Sharp, P. M.; Cunningham, P.
(1994): Microsatellite DNA variation within and among European cattle breeds. Proc. Roy. Soc. London B. Biol. Sci. 256. 25-31.
Magoulas, A. (1998): Application of molecular markers to aquaculture and broodstock management with special emphasis on microsatellite DNA. Cahiers Options Mediterranéennes. 34. 153-168.
Marklund, S.; Ellegren, H.; Eriksson, S.; Sandberg, K.; Andersson, L. (1994):
Parentage testing and linkage analysis in the horse using a set of highly polymorphic microsatellites. Animal Genetics, 25. 19-23.
Marshall, T. C.; Slate, J.; Kruuk, L.; Pemberton, J. M. (1998): Statistical confidence for likelihood-based paternity inference in natural populations.
Molecular Ecology. 7. 639-655.
Martin-Burriel, I.; García-Muro, E.; Zaragoza, P. (1999): Genetic diversity analysis of six Spanish native cattle breeds using microsatellites. Animal Genetics. 30. 177-182.
Maudet, C.; Luikart, G.; Taberlet, P. (2002): Genetic diversity and assignment tests among seven French cattle breeds based on microsatellite DNA analysis.
J. Anim. Sci. 80. 4: 942-950.
Miescher, F. (1869): Letter I; to Wilhelm His; Tübingen, February 26th, 1869.
In: His, W. et al. (Eds.), Die Histochemischen und Physiologischen Arbeiten von Friedrich Miescher - Aus dem wissenschaftlichen Briefwechsel von F.
Miescher, vol. 1. F.C.W. Vogel, Leipzig, pp. 33-38.
Miescher, F. (1871): Ueber die chemische Zusammensetzung der Eiterzellen.
Med.-Chem. Unters. 4. 441-460.
Mihók S. (2002): Tenyésztési módszerek a hagyományos magyar lófajták kialakításában és fenntartásában (In: Tibay Gy.: A magyar lótenyésztés az EU csatlakozás tükrében), Szent István Egyetem, Gazdaság- és Társadalomtudományi Kar, Vezető- és Továbbképző Intézet, Budapest
Mihók S.; Aliczky K.; Hidas A. (2006): Molekuláris markerekkel történő fajtaazonosítás és fajtavédelem a réghonosult lúdfajtákban. 86-94. (In:
Génmegőrzés: Hagyományos háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen
Moazami-Goudarzi, K.; Laloe, D.; Furet, J. P.; Grosclaude, F. (1997):
Analysis of genetic relationships between 10 cattle breeds with 17 microsatellites. Animal Genetics. 28. 338-345.
Mullis, K. B. and Faloona, F. A. (1987): Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerase chain reaction. Meth. Enzym. 155. 335−350.
Nakamura, Y.; M. Leppert; P. O'Connell; R. Wolff; T. Holm; M. Culver; C.
Martin; E. Fujimoto; M. Hoff; E. Kumlin; R. White. (1987): Variable number of tandem repeat (VNTR) markers for human gene mapping. Science. 235.
1616-1622.
Nei, M. (1972): Genetic distance between populations. American Naturalist.
106. 283–292.
Nei, M. (1973): Analysis of Gene Diversity in Subdivided Populations.
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 70. 12: 3321-3323
Nei, M. (1978): Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics. 89. 583-590.
Nei, M., Tajima, F., Tateno, Y. (1983): Accuracy of estimated phylogenetic trees from molecular data. Journal of Molecular Evolution. 19. 153-170.
Nozawa, K.; Shotake, T.; Ito, S.; Kawamoto, Y. (1998): Phylogenetic relationships among Japanese native and alien horses estimated by protein polymorphisms. J. Equine Sci. 9. 53-69.
O’Brien, S. J. (1991): Mammalian genome mapping. Lessons and prospects.
Genetics and Development (Különkiadás) 1. 105-111.
Page, R. D. M. (1996): TREEVIEW: An application to display phylogenetic trees on personal computers. Computer Applications in the Biosciences. 12.
357-358.
Pecsenye K. (2006): Populációgenetika. 117-118.; 254-263. Pars Kft., Nagykovácsi
Radko, A.; Duniec, M.; Zabek, T.; Janik, A.; Natonek, M. (2002):
Polymorphism of 11 microsatellite DNA sequence and their usefulness for paternity control in cattle. Polish Soc. Veterin. Sci. 58. 708-710.
Radko, A.; Zyga, A.; Zabek, T.; Slota, E. (2005): Genetic variability among Polish Red, Hereford and Holstein-Friesian cattle raised in Poland based on analysis of microsatellite DNA sequence. J. Appl. Genet. 46. (1.) 89-91.
Radnóczy L.; Zsolnay A.; Fésűs L.; Szabó P. (2006): DNS mikroszatellit vizsgálat a mangalica sertésfajtában. 56-64. (In: Génmegőrzés: Hagyományos háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen
Raymond, M. and Rousset, F. (1995): GENEPOP (1.2): a population genetics software for exact tests and ecumenicism. Journal of Heridity. 86. 248-249.
Richards, R. I. and Sutherland, G. R. (1994): Simple repeat DNA is not replicated simply. Nat. Genet. 6. 114-116.
Righetti, P. G. (1989): Of matrices and men. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 19. 1-20.
Rolfs, A.; Schuller, I.; Finkh, U.; Weber-Rolfs, I. (1992): PCR: Clinical diagnostics and research., Springer-Verlag, p. 2.
Romanov, M. N. and Weigend, S. (2001): Analysis of genetic relationships between various populations of domestic and jungle fowl using microsatellite markers. Poultry Sci. 80. 1057-1063.
Russel, R. J.; Festing, M. F. W.; Deeny, A. A.; Peters, A. G. (1993): DNA fingerprinting for genetic monitoring of inbred laboratory rats and mice.
Laboratory Animal Science (USA). 43. (5), 460-465.
Saiki, R. K.; Scharf, S.; Faloona, F., Mullis, K. B., Horn, G. T., Erlich, H. A., Arnheim, N. (1985): Enzymatic amplification of -globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science. 230.
1350−1354.
Saitbekova, N.; Gaillard, C.; Obexer-Ruff, G.; Dolf, G. (1999): Genetic diversity in Swiss goat breeds based on microsatellite analysis. Animal Genetics. 30. 36-41.
Schlötterer, C. and Pemberton, J. (1998): The use of microsatellites for genetic analysis of natural populations – a critical review. In: DeSalle, R. and Schierwater, B. (eds) Molecular Approaches to Ecology and Evolution.
Birkhäuser Verlag Basel. 71-86.
Schmid, M.; Saitbekova, N.; Gaillard, C.; Dolf, G. (1999): Genetic diversity in Swiss cattle breeds. J. Anim. Breed. Genet. 116. 1-8.
Smith, L. M. (1991): High-speed DNA sequencing by capillary gel electrophoresis. Nature. 349. 812 – 813.
Soós P. (1986): Őshonos és honosult háziállatfajtáink genetikai sajátosságai, 47-59. Kutatási jelentések, Kaposvár
Steffen, P.; Eggen, A.; Dietz, A. B.; Womack, J. E.; Stranzinger, G.; Fries, R.
(1993): Isolation and mapping of polymorphic microsatellites in cattle. Animal Genetics. 24. 121.
Sun-young Lee and Gil-jae Cho (2006): Parentage testing of Thoroughbred horse in Korea using microsaterllite DNA typing. Journal of Veterinary Science. 7. 1: 63-67.
Swerdlow H. and Gesteland; R. (1990): Capillary gel electrophoresis for rapid, high resolution DNA sequencing. Nucleic Acids Research. 18. 6:1415-1419.
Takahashi, H. K.; Nirasawa, K.; Nagamine, Y.; Tsudzuki, M.; Yamamoto, Y.
(1998): Genetic relationships among Japanese native breeds of chicken based on microsatellite DNA polymorphism. J. Hered. 89. 543-546.
Takács E.; Gyurmán A.; Gera I.; Bodó I. (2006): A genetikai variancia elszegényedését megakadályozó ritka allélek fenntartásának fontossága a magyar szürke fajtában. 108-115. (In: Génmegőrzés: Hagyományos
háziállatfajták genetikai és gazdasági értékének tudományos feltárása), Debreceni Egyetem, Debrecen
Tautz, D. and Renz, M. (1984): Simple sequences are ubiquitous repetitive components of eukaryotic genomes. Nucleic Acids Research. 12. 4127-4138.
Tautz, D. (1989): Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nucleic Acids Research. 17. (16), 6463-6471.
Tiselius, A. (1937): Electrophoresis of serum globulin. I. Biochemical Journal. 31. 313-317.
Toldo, S.; Fries, S. R.; Steffen, P.; Neibergs, H. L.; Barendse, W.; Womack, J.
E.; Hetzel, D. J. S.; Stranzinger, G. (1993): Physically mapped, cosmid-derived microsatellite markers as anchor loci on the bovine chromosome. Mammalian Genome. 4. 720-727.
Tozaki, T.; Kakoi, H.; Mashima, S.; Hirota, K.; Hasegawa, T.; Ishida, N.;
Miura, N.; Choi-Miura, N.; Tomita, M. (2001): Population study and validation of paternity testing for Thoroughbred horses by 15 microsatellite loci. J. Vet.
Med. Sci. 63. 11: 1191-1197.
Tozaki, T.; Takezaki, N.; Hasegawa, T.; Ishida, N.; Kurusawa, M.; Saitou, N.;
Mukoyama, H. (2003): Microsatellite variation in Japanese and Asian horses and their phylogenetic relationship using a European horse outgroup. J. Hered.
94. 374-380.
Vaiman, D.; Mercier, D.; Moazami-Goudarzi, K.; Eggen, A.; Ciampolini, R.;
Lepingle, A.; Velmala, R.; Kaukinen, J.; Varvio, S. L.; Martin, P.; Levéziel, H.; Guérin, G. (1994): A set of 99 cattle microsatellite: characterization, synteny mapping and polymorphism. Mammalian Genome. 5. 288-297.
Van Haeringen, W. A. and Van Haeringen, H. (1992): Genetic markers in Friesian horses. Animal Genetics, 23. (Suppl. 1.) 13.
Van Haeringen, H.; Bowling, A. T.; Stott, M. L.; Lenstra, J. A.; Zwaagstra, K.
A. (1994): A highly polymorphic horse microsatellite locus: VHL20. Animal Genetics, 25. 207.
Van Zeveren, A.; Peelman, L.; Van de Weghe, A; Bouquet, Y. (1995): A genetic study of four Belgian pig populations by means of seven microsatellite loci. Journal of Animal Breeding and Genetics. 112. 191-204.
Venetianer P. (1998): A DNS szép új világa. 20-30. Kulturtrade Kiadó Kft., Budapest
Watson, J. D. and Crick, F. H. (1953a): Molecular structure of nucleic acids;
a structure for deoxyribose nucleic acid. Nature. Apr 25; 171. (4356):737-8.
Watson, J. D. and Crick, F. H. (1953b): The structure of DNA. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 18. 123-31.
Weaver, R. F. and Hedrick, P. W. (2000): Molekuláris genetika. In:
GENETIKA. 129-150., Panem Könyvkiadó, Budapest
Weber, J. L. and May, P. E. (1989): Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction.
American Journal of Human Genetics. 44. 388-396.
Wiener, P.; Burton, D.; Williams, J. L. (2004): Breed relationships and definition in British cattle: a genetic analysis. Heredity. 93. 597-602.
Woodruff, D. S. (1993): Non-invasive genotyping of primates. Primates. 34.
333-346.
Wright, S. (1965): The interpretation of population structure by F-statistics with special regard to systems of mating. Evolution. 19. 395-420.
Wright, S. (1978): Evolution and the genetics of populations.Variability within and among natural populations. 4. University of Chicago Press; Chicago Yeh F. C. and Boyle T. B. J. (1997): POPGENE Microsoft Windows-based software for population genetic analysis. A joint project development by Francis C. Yeh, University of Alberta and Tim Boyle, Center for International Forestry Research, Bogor, Indonesia. 29 p.
Zabek, T.; Nogaj, A.; Radko, A.; Nogaj, J.; Slota, E. (2005): Genetic variation of Polish Endangered Bilgoraj horses and two common horse breeds in microsatellite loci. J. Appl. Genet. 46. (3) 299-305.
Zhou, H. J.; Lamont, S. J. (1999): Genetic characterization of biodiversity in highly inbred chicken lines by microsatellite markers. Animal Genetics. 30.
256-264.
Zhu, J.; Nestor, K. E.; Patterson, R. A.; Jackwood, D. J.; Emmerson, D. A.
(1996a): Measurement of genetic parameters within and between turkey lines using DNA fingerprinting. Poultry Sci. 75. 439-446.
Zhu, J.; Nestor, K. E.; Moritsu, Y. (1996b): Relationship between band sharing levels of DNA fingerprints and inbreeding coefficients and estimation of true inbreeding in turkey lines. Poultry Sci. 75. 25-58.
Zsolnai A. (2000): Molekuláris genetikai módszerek (In: Molekuláris genetikai módszerek alkalmazása az állattenyésztésben). 11-54., Agroinform Kiadó és Nyomda Kft., Budapest
Zsolnai, A.; Radnóczy, L.; Fésüs, L.; Anton, I. (2006): Do Mangalica Pigs of Different Colours Really Belong to Different Breeds? Archives für Tierzuht, 49. 477-483
TÁBLÁZATOK JEGYZÉKE oldal 1. táblázat: A ló fajban vizsgált 17 mikroszatellit listája
(StockMarks® for Horses Equine 17-plex Genotyping System, Applied
Biosystems) 32
2. táblázat: A szarvasmarha fajban vizsgált 11 mikroszatellit listája (StockMarks for Cattle® Bovine Genotyping Kit) 33 3. táblázat: A vizsgált lófajták megfigyelt és effektív allélszámai, és a Shannon-féle információs index lókuszonként 48 4. táblázat: Az egyedi allélek száma, fajtaspecifikus allélek a vizsgált 4
lófajtában 54
5. táblázat: A vizsgált lófajták allélgazdagsága (Ar) a 17 mikroszatellire
nézve 55
6. táblázat: Várt és megfigyelt heterozigozitás (He, Ho), Nei-féle várt heterozigozitás (Hexp) értékek a vizsgált lófajtákban 56 7. táblázat: A vizsgált lófajtákban mért allélgyakoriságokból számított
néhány genetikai mérőszám 58
8. táblázat: A ló fajtapárok közötti fixációs index (FST) és génáramlás (Nm
= gene flow) 61
9. táblázat: A 17 mikroszatellitre számolt PE (probability of exclusion)
értékek a vizsgált négy lófajtában 62
10. táblázat: A vizsgált húsmarha fajták megfigyelt és effektív allélszámai, és a Shannon-féle információs index lókuszonként 64 11. táblázat: Az egyedi allélek száma, fajtaspecifikus allélek a vizsgált 5
húsmarha fajtában 69
12. táblázat: A vizsgált húsmarha fajták allélgazdagsága (Ar) 11
mikroszatellire nézve 70
13. táblázat: Várt és megfigyelt heterozigozitás (He, Ho), Nei-féle várt heterozigozitás (Hexp) értékek a vizsgált húsmarha fajtákban 72 14. táblázat: A vizsgált húsmarha fajtákban mért allélgyakoriságokból
számított néhány genetikai mérőszám 74
15. táblázat: A húsmarha fajtapárok közötti fixációs index (FST) és génáramlás (Nm = gene flow) 78 16. táblázat: A 11 mikroszatellitre számolt PE (probability of exclusion) értékek a vizsgált öt szarvasmarha fajtában 77
17. táblázat: A dióspusztai angol telivér állomány néhány genetikai
mérőszáma 81
18. táblázat: A kerteskői angol telivér állomány néhány genetikai
mérőszáma 82
19. táblázat: A ló populációpár közötti fixációs index (FST) és génáramlás
(Nm = gene flow) értékei 83
20. táblázat: A húsmarha populációpár közötti fixációs index (FST) és
génáramlás (Nm = gene flow) értékei 85
21. táblázat: A derecskei magyar tarka állomány néhány genetikai
mérőszáma 86
22. táblázat: A hajdúböszörményi magyar tarka állomány néhány
22. táblázat: A hajdúböszörményi magyar tarka állomány néhány