1
Általános Genetika
A génműködés szabályozása
prokariótákban
2
Bármely sejtben
adott pillanatban a géneknek csak egy része működik, a többi kikapcsolt állapotban van Konstitutív, housekeeping gének
Regulált
ahhoz, hogy a sejt ezt megvalósíthassa, szüksége van:
1. A gének ki és bekapcsolását végző mechanizmusra
2. Fel kell tudni ismernie azokat a körülményeket, melyek egy gén ki vagy bekapcsolását teszik szükségessé
3
A génműködés szabályozása több szinten megvalósulhat
1. A génátírás (transzkripció) ki-bekapcsolása és hatásfokának szabályozása
2. A mRNS érésének és életidejének szabályozása 3. A fehérjeképződés (transzláció) ki-bekapcsolása
és intenzitása
4. A fehérjeműködés hatékonyságának szabályozása (poszttranszlációs módosítás, végtermék-gátlás)
5. A fehérje életidejének szabályozása által
gén
fehérje
fenotípus
4
Prokarióta
génkifejeződés szabályozás
a transzkripció szintjén
Gazdaságos
Viszonylag lassú
5
1. A transzkripció iniciációjának befolyásolása:
1a) Szabályozó fehérjék kötődése a promóter közelében
• E.coli lac, ara, trp operonjai
1b) RNS-polimeráz szigma alegysége (-faktor) által
• E. coli speciális szigma faktorai stressz stb. esetén
• B. subtilis sporuláció
• B. subtilis SPO1 fág fertőzése
2. A transzkripció terminációjának befolyásolása:
attenuáció – génátírás csendesítése „korai” transzkripció terminációval
• E.coli trp operon
antitermináció – génátírás folytatása terminációs szignál ellenére is
• lambda fág
6
A környezet kétféle módon tud hatni a transzkripcióra
1. A környezeti hatás bekapcsol
inaktív gén(ek)t 2. A környezeti hatás kikapcsol működő gén(ek)t
A lebontó folyamatok génjeire jellemző
szabályozás Az építő folyamatok génjeire jellemző szabályozás
A gének környezet általi ki-és bekapcsolása egyaránt szabályozó fehérjék közvetítésével valósul meg
7
Genetikai kapcsoló: szabályozó fehérje és annak target DNS-szekvenciája Szabályozó fehérjék: represszorok és aktivátorok
Allosztérikus effektor: a szabályozó fehérje konformációját, ezáltal DNS- kötését befolyásoló kismolekula
- korepresszor - koaktivátor - inducer
Operátor régió: a represszor fehérje kötőhelye a DNS-en Pozitív szabályozás: átírás fokozása
– aktiválással
- gátlás megszüntetésével (indukció) Negatív szabályozás: átírás mérséklése
- gátlással (represszió)
- aktiválás felfüggesztésével
OPERON: egy transzkripcionális egységet alkotó (közös promóterről
policisztronos mRNS-re átíródó) gének csoportja, a szabályozó elemekkel együtt REGULON: közös mechanizmussal szabályozott operonok csoportja
Példa:
A lac operon működésének felderítése
(1950-es évek)
9
A lac operon működésének felderítése
(1950-es évek) Francois JacobJacques Monod
Andre Lwoff Nobel díj 1965
E. coli laktóz metabolizmusában tanulmányozták az ún. enzim "adaptáció" jelenségét
az enzim megjelenését a szubsztrát váltja ki
Izotóppal jelzett aminosavak segítségével bizonyították, hogy az enzim a laktóz adást követően újonnan szintetizálódik
Miből "tudja" a sejt, hogy mikor kell termelni a megfelelő enzimeket?
A laktóz hidrolízisét végző enzim, a -galaktozidáz laktózzal és más galaktozidokkal is indukálható
10
-galaktozidáz
A -galaktozidáz homotetramer enzim
-galaktozidáz enzim mennyiségi meghatározását eleinte specifikus ellenanyaggal (antigalaktozidáz) végezték
A -galaktozidáz enzim nem mindig van jelen az E. coli sejtekben:
csak akkor termelődik, ha laktóz kerül a táptalajba Az inducer (laktóz) eltávolítása leállítja az enzim szintézisét
Tehát a sejtek ki-be tudják kapcsolni a géneket pl. környezeti szignálokra
11
Genetikai térképezés:
> három gén, közvetlenül egymás mellett
lacZ -galaktozidáz
2. lacY galaktozid permeáz
3. lacA galaktozid transzacetiláz
Laktóz adásakor mindhárom gén indukálódik:
> egyszerre szabályozódnak
OPERON – egy génműködési egység (több gén + szabályozó elemeik, melyben a gének együttesen szabályozódnak)
Gének együttes szabályozása
Lac- fenotípus: a mutáns baktérium nem képes a laktózt hasznosítani (kizárólagosan laktózon nőni)
lacZ lacY lacA
12
A béta-galaktozidáz aktivitás kimutatására és az indukció kiváltására mesterséges galaktozid származékokat próbáltak ki
Egyes vegyületek akár 1000x több enzim megjelenését indukálhatják (az alapszinthez képest)
Mesterséges galaktozid származékok
13
A béta-galaktozidáz és a galaktozid transzacetiláz enzimek indukciója különböző galaktozid származékok hatására
pl. az IPTG kiváló indukáló, de nem szubsztrátja az enzimnek (V=0)
> Az indukció független a laktózbontástól (az enzimhez kötődéstől) Más az érzékelő és más a végrehajtó rendszer
Előny az IPTG általi indukcióban, hogy nem fogy az indukció előrehaladtával
14
Kromogén szubsztrátok
egyszerű az aktivitás követése, mert színes termék is keletkezik a reakció során
o-nitrophenyl beta-D-galactopyranosideONPG
X-gal
5-bromo-4-chloro-3-indolyl-beta-D- galactopyranoside
15
Szabályozásban hibás mutánsok
kromogén szubsztátok megjelenése
az alapvető gének (lacZY) megismerése, térképezéseés
> lehetőség nyílt különleges fenotípusú mutációk felismerésére is
-galaktozidáz aktivitást nem mutató illetve túltermelő törzsek könnyen azonosíthatók a színreakciókkal
16
konstitutív mutáns:
- akkor is termel -galaktozidázt, amikor nincs jelen indukáló szer
Ezeket úgy izolálták, hogy az E.coli mutált tenyészetét fenil-β-galaktozid, mint egyedüli szénforrás jelenlétében növesztették. Ez a galaktozid szubsztrátja ugyan a β-
galaktozidáznak, de nem indukálja azt. Ezt csak azok a mutáns sejtek képesek
hasznosítani, amelyek a β-galaktozidázt induktor hiányában is, konstitutívan termelik
Azok a gének, amelyek elrontása a -galaktozidáz konstitutív
termelését eredményezi, ép állapotban gátolják az enzim termelését
Konstitutív és nem indukálható -galaktozidáz mutánsok
nem indukálható mutáns:
- az indukálószer adása után sem jelenik meg az enzim aktivitása
Izolálásuk: X-gal + IPTG > fehér kolóniák (a sok kék között)
Azok a gének, melyek elrontása megakadályozza a laktóz bontó enzimaktivitás megjelenését, nélkülözhetetlenek az aktivitáshoz, beleértve az enzimet kódoló gént
17
A konstitutív mutánsok térképhelyzet alapján két lókuszt jelöltek ki
lacI lacO
Konstitutív és nem indukálható -galaktozidáz mutánsok térképhelyzete
A nem indukálható mutánsok két fő csoportja a lacZ és lacY területére térképeződött
ezek a laktóz anyagcsere két fő enzimének mutánsai
a lacA gén nem bizonyult nélkülözhetetlennek a laktóz bontáshoz
lacZ lacY lacA
18
A lac operonra nézve részlegesen diploid (parciális diploid) törzsek létrehozása
Az allélek dominanciaviszonyainak megállapítása I.
Genotípus β-galaktozidáz enzimaktivitás indukálás nélkül
β-galaktozidáz enzimaktivitás
indukálással Fenotípus, következtetés
I+Z+ (vad) – + ha I+, indukálható
I-Z+ + + ha I-, konstitutív
I+Z- – – ha Z-, nem indukálható
I+Z- / F’ I-Z+ – + indukálható,
I+ domináns I- felett, I+ transz módon hat
A lacI gén terméke egy diffúzibilis represszor fehérje
19
A lac operonra nézve részlegesen diploid (parciális diploid) törzsek létrehozása
Az allélek dominanciaviszonyainak megállapítása II.
A lacO egy cisz szabályozó elem (DNS-szakasz) Genotípus β-galaktozidáz
enzimaktivitás indukálás nélkül
β-galaktozidáz enzimaktivitás
indukálással
Fenotípus, következtetés
O+Z+ (vad) - + ha O+, indukálható
OCZ+ + + ha OC, konstitutív
OCZ- és O+Z- - - ha Z-, nem indukálható
O+Z- / F’ OCZ+ + + konstitutív,
OC cisz domináns módon hat
20
Az Operátor mutációk mindegyike a promóter és a Z lókusz közé eső 21bp-nyi szakaszra térképeződik lacI lacO lacZ lacY lacA
PAz operátor mutánsok O szakaszának szekvencia változásai A szekvencia tükörszimmetrikus
A mutánsokban megváltozó bázisok közvetlenül kapcsolódnak a represszorhoz mutáns vad típus
21
LacI represszor
tetramer (2x2 360 aa -helix)
lacI lacO lacZ lacY lacA
P22
A lac promoter (P)
A promóter (P) szakaszra eső mutációk (melyek az I és O gének közé
térképeződnek) mindhárom gén transzkripciós kifejeződési szintjét csökkentik A P mutációk az RNS polimeráz kötődését befolyásolják.
23
A lac operon regulációs szakaszának szerkezete
24
A lac operon felépítése és negatív szabályozása
25
A lac operon pozitív szabályozása
CAP (CRP) fehérje + cAMP komplex által valósul meg
A sejtek két cukorforrás közül előbb a glükózt fogyasztják Amíg glükóz hozzáférhető a sejt számára, a lac, ara, mal, gal
operonokról – a laktóz, arabinóz, maltóz, galaktóz indukció ellenére is – csak gyengén folyik az átírás – mert ilyenkor hiányzik a pozitív
szabályozás
CAP = CRP
katabolit cAMP
aktivátor receptor
protein protein
Glükóz hiányában működik
26
Katabolit represszió?
A lac-operon:
• glükóz jelenlétében és laktóz hiányában represszált állapotban van
• glükóz hiányában és laktóz jelenlétében aktív (indukált) állapotban van
• glükóz és laktóz együttes jelenlétében azonban csak gyengén aktiválódik
> a glükóz erős gátló befolyást gyakorol az operon működésére
Kezdetben azt gondolták, hogy a glükóz bontás végtermékei (katabolitjai) gátolják (represszálják) az operon működését, ezért a jelenséget katabolit repressziónak nevezték el
Később bebizonyosodott, hogy a feltételezés hibás, de a helytelen elnevezés ennek ellenére megragadt a szaknyelvben
27
A szabályozás a cAMP szinten keresztül érvényesül
active transcription
28
Az exogén glükóz gátolja:
1. a cAMP képződést
(inaktív = nem foszforilált adenilát cikláz AC)
2. egyéb cukrok felvételét
(pl. laktóz, inaktív permeáz) Kulcs:
a IIAGlc foszforilált/defoszforilált formáinak aránya
29
A cAMP-CAP komplex egy tükörszimmetrikus DNS szekvenciát ismer fel a promóteren
A komplex kötődése több mint 90o-al meggörbíti a promóter DNS-ét, ami előfeltétele a polimeráz stabil kötődésének
A cAMP-CAP komplex DNS kötése erősíti a promótert
30
Negatív és pozitív szabályozás egymásra épülése
Glükóz van (cAMP alacsony); laktóz nincs
nincs átírás
31
Negatív és pozitív szabályozás egymásra épülése
Glükóz van (cAMP alacsony); laktóz van Glükóz van (cAMP alacsony); laktóz nincs
gyenge átírás nincs átírás
(„ereszt”)
32
Negatív és pozitív szabályozás egymásra épülése
Glükóz nincs (magas cAMP); laktóz van Glükóz van (cAMP alacsony); laktóz van
Glükóz van (cAMP alacsony); laktóz nincs
erős átírás
nincs átírás
gyenge átírás
33
A lac operon elemeinek biotechnológiai alkalmazása
Génexpressziós vizsgálatokban: a lacZ-t mint riportergént
Fehérjeexpressziós rendszerekben: a szabályozható lac promótert Génklónozásban: kék-fehér teszt
34
Globális szabályozó mechanizmusok
Jelentős környezeti változások pl. limitált tápanyagforrás
stressz (ozmotikus, hő, oxigén)
Több operon együttes szabályozása – REGULON Általában egy közös szabályozó fehérje által
Pl. az ún. CAP-regulon tagjai:
lac, ara, gal, mal operonok
35
36
Példa:
Az ara operon
kettős pozitív és negatív szabályozása
37
Kettős pozitív és negatív szabályozás az ara operonban
az arabinóz cukor lebontásához szükséges enzimek génjeit és szabályozó elemeiket tartalmazza
3 struktúrgén kódolja az enzimeket:
ara-A ara-B ara-D
Az ara-C gén terméke arabinózzal kapcsolódva képes a promóterre (I)
kötődni, ami lehetővé teszi a transzkripció elindulását.
Erre ráépül még egy másik pozitív kontroll, a cAMP-CAP rendszer, mely azonos a lac- operonban megismerttel.
Kettős aktiválás (pozitív szabályozás):
AraC + arabinóz (induktor) CAP + cAMP
38
Kettős pozitív és negatív szabályozás az ara operonban
Represszió (negatív szabályozás):
Kettős aktiválás (pozitív szabályozás):
AraC + arabinóz CAP + cAMP
Arabinóz hiányában az Ara-C fehérje egy allosztérikus alakváltozás miatt most represszor szerepet játszik.
Egyszerre kapcsolódik az araI
promóterhez és az operátorhoz, ami egy transzkripciót gátló DNS hurkot eredményez.
39
Példa:
A trp operon
finom szabályozás a transzkripció
terminációjával
40
Az E.coli triptofán szintézis útvonalának génjei a reakció sorrendnek
megfelelő sorrendben találhatók a kromoszómán, és közös szabályozás alá esnek
transzkripció
A trp operon
41
nincs transzkripció
triptofán-represszor komplex
Transzkripciós gátlás (represszió) a trp -operon szabályozásában
A trp-operon transzkripciója negatív visszacsatolással szabályozódik:
- magas triptofán szint esetén a trp-represszor komplex az operátorhoz kötődve gátolja a transzkripciót
Meglepő:
- a trp-represszor mutánsok még mindig képesek a génműködést szabályozni a triptofán koncentráció függvényében….
Trp = korepresszor
42
A trp operon finomszerkezete
transzkripció
(transzkripció terminációs jel)
43
A trp mRNS elejének (leader) kétféle másodlagos szerkezete lehet
A színessel jelzett szekvenciák megfelelnek az előző ábrán ugyanígy jelzett szakaszoknak
44
A trp mRNS elejének (leader) kétféle másodlagos szerkezete lehet
A színessel jelzett szekvenciák megfelelnek az előző ábrán ugyanígy jelzett szakaszoknak
trp
kodonok
45
Ha kevés a trp a sejtben, a riboszóma hosszan kötésben tartja az 1-es szakaszt, mert az két triptofánt kódol.
A lassú transzláció miatt a 2-3 kötés stabilizálódik, így 3-4 kötés nem alakulhat ki, ezért folytatódhat a
transzkripció.
Attenuáció (= transzkripció mérséklése) a trp operonban
Ha sok a triptofán a sejtben az 1- es szakasz gyorsan transzlálódik.
Ez esetben a 2-3-as kötés nem alakulhat ki, így stabil 3-4 kötés jön létre, ami a transzkripció idő előtti terminációját okozza, vagyis nem íródnak át az enzimek génjei.
46
A transzkripció iniciációjának szabályozása speciális szigma (σ) faktorok által