BIOLÓGIA és BIOTECHNOLÓGIA 4. rész
BIOLÓGIA és BIOTECHNOLÓGIA 4. rész
Előadók: Ballagi András,
c. egyetemi tanárRichter Gedeon NyRt. - BME
Írásos segédanyag található a:
1
Írásos segédanyag található a:
http://oktatas.ch.bme.hu
/oktatas /konyvek /mezgaz
/Biol-biotech-vegyész-MSc címen
A tananyag szerkezete:
2
Overwiew
Biorector
Main
Imp
Features
Kevert tankreaktor
– Stirred Tank Reactor (STR) Air Lift Reactor
STR geometriai paraméterei
STR geometriai paraméterei
STR keverő típusok
STR keverő típusok
Rushton turbine
Rushton turbine
A tananyag szerkezete:
12
A mikroba szaporodás alapösszefüggései
BINÁRISAN OSZTÓDÓ MIKROORGANIZMUS
1=X0*20
2=X0*21
4=X0*22
n=1
n=2
8=X0*23
16=X0*24
n=3
n=4
n:a generációk száma
. .
X=X02n
A mikroba szaporodás alapösszefüggései
t
gn = t
a generációk számaGenerációs idő - doubling time generation time
N, x
Sejtszám db/ml
Sejttömeg: sz.a.
mg/ml, g/l,kg/m3
t
n 0
t t
0
2 x 2
x
x =
g=
MONOD, 1942
dt x
dx = µ .
µ: fajlagos növekedési sebesség
A mikroba szaporodás alapösszefüggései
x dt .
dx = µ N
dt
dN = ν .
e t
x
x = µ N = N e ν t
Jacques Monod
v : fajlagos szaporodási sebesség
t 0 e x
x = µ N = N 0 e ν t
µ és a generációs idő kapcsolata:
= ln µ 2
t
gA mikroba szaporodás alapösszefüggései
x ∞
t 0 e x
x = µ
t
x
0Mikróba
A mikroba szaporodás alapösszefüggései
MI AZ OKA A HANYATLÓ FÁZISNAK?
1. TÁPANYAG LIMITÁCIÓ
2. TOXIKUS METABOLIT TERMÉK(EK)
3. HELYHIÁNY
µ µ
maxMONOD- modell
µ
max2
Κ
SS
kritikusS
S K
S
S
max +
µ
=
µ
A mikrobaszaporodás alapösszefüggései
µ µ
maxΚ
SCS
krCS
0CC-forrás
~ ~
FERM.IDEJE
µ µ
maxΚ
SNS
krNS
0NN-forrás
~ ~
FERM.IDEJE
MELYIK S LESZ LIMITÁLÓ SZUBSZTRÁT ???
Κ
SS
krS
0Κ
SS
krNS
0Nµ
maxµ
Κ
SOS
krOS
0OO
2~ ~
FERM.IDEJE
µ µ
maxΚ
SVS
krVS
0VVITAMIN
-forrás
~ ~
FERM.IDEJE
MONOD modell-család
x x
P P x P
GAEDEN-féle termékképződési típusok
Primer acs. termék Szekunder acs. termék
Növekedéshez kötött Vegyes típus Növekedéshez nem kötött
µx µx
µx µP
µP µP
MONOD modell-család TERMÉKKÉPZŐDÉS KINETIKAI LEÍRÁSA
LUEDEKING – PIRET MODELL
β αµ
µ
β α
+
=
=
+
=
=
x P
P
dt dP x
dt x dx dt
r dP
1
µP
tgφ=α
III.
µX β
tgφ=α φ
φ β
III.
I II.
I: α>0 és β = 0 növekedéshez
kötött termékképzõdés II: α = 0 és β>0 növekedéshez nem
kötött termékképzõdés III: α>0 és β>0 vegyes típusú
fermentáció.
Tenyésztési módszerek: Sejtek szakaszos tenyésztése
Kevert tankreaktor Szubmerz
tenyésztés
Tenyésztési módszerek: Folyamatos tenyésztés
Dilution rate: 0.6 - 2.0 / day
Kevert tank reaktorban szubmerz tenyésztés
folyamatos átfolyással, sejtvisszatartással, vagy sejt és termék visszatartással.
250 L bioreactor Medium
Tank 4000 L
Harvest Retaining tank
unit
1000 liter each
P1 P2
So S,X
S,X
f f
V
D
V f =
D: higítási sebesség
Folyamatos tenyésztés
Friss tápoldat CSTR “leerjedt”
fermentlé P- szivattyú
sejttömeg:
i-edik szubsztrát:
V dx
dt V dx
dt f x
növekedés
=
− .
növekedés S
x i
i i
dt dx S Y
S dt f
V dS
i
−
−
=
/ 0
,
) 1 (
ds Y dx =
Y: hozamkonstans
( )
D xS K
x S D Dx
dt x dx
S
−
= +
−
=
−
= µ µ µmax
0 dt =
dS és
= 0 dt
( )
S S Yx dx dt DdS = − −
µ
0Egy limitáló szubsztrát esetében:
µ=D
Az állandósult állapot szükséges és elégséges feltétele:
Folyamatos tenyésztés
D D S
K D S
S
+ −
=
max S max
= K S illetve
µ µ
( )
x Y S S Y S K D D
= − = −
S−
0 0
µ
max( )
Y S x
S
D − = µ
0
µ=D
FOLYTONOS FERMENTÁCIÓ
Tranziens viselkedés
Indulás szakaszosról, áttérés a folytonosra
Mindíg csak itt üzemelhet!
RÁTÁPLÁLÁSOS (FED-BATCH) TENYÉSZTÉS
A hanyatló fázis meghosszabbításaként értelmezhetjük a fed batch technikát, állandó, változó vagy periódikus módon friss tápanyago(ka)t adagolunk a rendszerbe, elvétel nincs,
állandóan növekvő térfogat.
alacsony állandó szintű S koncentráció (pl. élesztőfermentációban, glükóz represszió elkerülése),
magas állandó S koncentráció (pl. citromsav fermentációban)
prekurzor folyamatos adagolása (pl. penicillin gyártásban fenilecetsav, v. triptofán gyártásban indol)
FED BATCH FERMENTÁCIÓ NÖVEKEDÉSI GÖRBÉJE
Medium tank
A FERMENTÁCIÓS ELJÁRÁSOK OPTIMALIZÁLÁSA A FERMENTÁCIÓS ELJÁRÁSOK OPTIMALIZÁLÁSA Táptalaj összetevők (inokulum, fő táptalaj)
Oxigénellátás (keverés, buborékoltatás) Hőmérséklet
pH
Inokulum (oltótenyészet) mennyisége
29
Inokulum kora Tenyésztés ideje
Indukció (ha van) időpontja
Betáplálás ideje és sebessége
Fermentor felépítése
A tananyag szerkezete:
30
Az oxigén felhasználása eukarióta sejtben
31
O2 => 2H2O
O
O22 alacsony alacsony oldhatóságúoldhatóságú a vízbena vízben Folyamatos Folyamatos OO22 betáplálás kellbetáplálás kell dc = K
La (c*-c) - qx dt
bevitel bevitel (OTR) (OTR)
fogyasztás fogyasztás
Oxigénellátás fermentlében
KL – az eredő folyadékoldali tömegátadási tényező [cm.s-1],
δg
O2
δl
kg kl
C
flokkulummikrobagomba pellet
32
tényező [cm.s-1],
a – térfogategységre jutó anyagátadási felület [cm2.cm-3= cm -1],
KL a – eredő folyadékoldali (térfogati) oxigénabszorpciós együttható[h-1],
C* – telítési oxigénkoncentráció (mg/dm3), C – az aktuális oldottoxigén-koncentráció (mg/dm3).
l
egyedi sejt
A z oxigén útjának leglassabb lépése a gázfázisból a
folyadékfázisba való átmenet.
OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS
A mikrobák oxigénigényét két módon lehet megadni:
1. légzési sebesség =
dc dt
[ mmol O2/ dm3.h], [kg O2/ m3 .h]
Q dc
= 1
[ h-1 ]
2. fajlagos légzési sebesség
Az oxigén is lehet limitáló szubsztrát
Q x
dc
= 1 dt
[ h-1 ]
2. fajlagos légzési sebesség
dx dt
c
K c x
O
= µ
max+
2
Y x
O
= ∆ c
∆
OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS
dc dt
1 Y
dx dc
1 Y
c
K c x
O O
max
O2
= − = −
µ +
Q 1 x
dc dt
1 Y
c
K c
O
max
O2
= = −
µ +
Q ≅ Q
Q ≅ Q max
µmax – fajlagos növekedési sebesség
Yo – eredő oxigénhozam (az elnevezés kissé zavaró, hiszen itt nem oxigén-előállításról van szó); jobb az oxigénre vonatkozó eredő hozam kifejezés)
Qmax – maximális fajlagos oxigénigény vagy maximális fajlagos légzési sebesség
KO2 – oxigénre vonatkozó szubsztráttelítési állandó (Monod-modell)
OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS
Q Qmax=µmax/YO
nulladrendű kinetika
Q
maxQ ≅
elsőrendű kinetika
KO2 Ckr C
2
max
K
OQ c Q ≅
Ckr – kritikus oldottoxigén koncentráció
OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS OXIGÉNIGÉNY ÉS LEVEGŐZTETÉS
A glükóz és oxigén, mint szubsztrátok összehasonlítása (Saccharomyces cerevisiae)
Glükóz Oxigén
Koncentráció a fermentlében 1% ≈104 mg/dm 7 mg/dm3
Kritikus koncentráció 50 mg/dm3 0,7 mg/dm
Kritikus koncentráció 50 mg/dm3 0,7 mg/dm
Fajlagos felhasználási 580 mg/g.h 208 mg/g.h sebesség
A tananyag szerkezete:
37
Sterilisation
Sterilisation are applied:
- to ensure that the process is carried out only with the desired organism, to avoid loss in productivity and competition for the substrates
- to avoid environmental contamination
- to prevent deterioration of the final product, e.g., beta-lactam antibiotics
38
- to prevent deterioration of the final product, e.g., beta-lactam antibiotics contaminated by beta-lactamase-producing bacteria
- to prevent contamination of the final product, e.g., pharmaceutical products by pyrogene compounds.
Sterilisation by
- removing organisms (filtration) - heating
- irradiation - chemicals
- extreme circumstances in the culture, e.g., pH, toxic substrates
mechanism of killing
heat (protein, DNA, RNA; the function of water) heat (protein, DNA, RNA; the function of water) radiation
- UV (pyrimidine dimers),
- gamma-ray, X-ray (breaking DNA and/or create peroxides and free radicals)
chemicals (oxidising or alkylating, but often also toxic, carcinogenic, explosive)
Kinetics of heat sterilization
Decimal
Practical methods:
batch: autoclave,
direct steam injection, indirect heating
(problems by big volumes) continuous flow sterilisation
Methods for heat sterilizations
1.) rapid heating up
2.) holding at the sterilising temperature 3.) rapid cooling
Schematic diagrams of continuous flow sterilisation
Factors
Filter sterilisation
by depth filters (fibrous material like fibreglass, cotton, mineral wool, cellulose, asbestos)
N/No = e-Kx x - depth of filter
x can be calculated - necessary parameters:
- total amount of air provided, e.g., 10 m3/min for 100 hr.
44
- total amount of air provided, e.g., 10 m /min for 100 hr.
- linear air velocity, e.g., 0.15 m/sec.
- air contaminated by, e.g., 200 microorg./ m3 - desired sterility, e.g., 1 microorg./ 1000 m3
Membrane filters (absolute filters with 0.2-0.45 µm pore size) remove bacteria but not viruses or enzymes !
Filter sterilisation
45
A tananyag szerkezete:
46
MŰVELETI SORREND MŰVELETI SORREND
Nincs rögzített sorrend, de vannak általános irányelvek:
1. Sejtek elválasztása → szilárd-folyadék elválasztás
más szilárd anyagok: táptalaj-szemcsék, CaCO3, kristály-fermentáció Jellemző műveletek:
Szűrés
Centrifugálás
47
(ülepítés)
(1/b Sejtfeltárás: csak akkor szükséges, ha a termék intracelluláris)
MŰVELETI SORREND MŰVELETI SORREND
2
.
Koncentráló lépés(ek) → a nagyobb mennyiségben jelen lévő szennyezéseket, elsősorban a vizet választjuk el.Jellemző műveletek:
Extrakció
48
Extrakció Adszorpció
Membránszűrés Csapadékképzés
(bepárlás, desztilláció)
MŰVELETI SORREND MŰVELETI SORREND
3. Tisztítás → a termék és a szennyező anyagok elválasztása.
Jellemző műveletek: az összes eddigi + kromatográfia
49
4. Végtisztítás (polishing)→ a terméket a kereskedelmi forgalomba hozás előírásainak megfelelő tisztaságig tisztítják.
Jellemző műveletek:
az összes eddigi + kristályosítás + szárítás
Chromatography
Ion exchange –
based on differences on protein surface charge at a given pHGel filtration –
differences in mass or shape of proteinsAffinity chromatography –
biospecific interaction between protein and an appropriate ligand e.g.and an appropriate ligand e.g.
competitive inhibitor or antibody/antigen
Hydrophobic interaction –
differences in surface hydrophobicities of proteinsChromatofocusing -
differences in isoelectric pointsGeneral
Chroma Mobile
Gel filtration
Ion exchange chromatography
Protein molecules are charged except at their isoelectric point (pI).
Proteins are charged differently at the same pH. Charge depends on AA-s.
Positive charge below pI, negative charge above pI
Can interact reversibly with solid matrix with opposite charge due to electrostatic attraction
charge due to electrostatic attraction
Often based on cellulose or agarose with charged groups attached
Having attached to matrix, proteins can elute by changing salt conc or pH, often in gradient.
Ion exchange chromatography
Ion exchange chromatography
Hydrophobic interaction chromatography
7 hydrophobic AAs -found in different proportions on surface in different proteins
Most on internal parts of folded protein Tend to be arranged in patches
Can interact with hydrophobic groups on a column matrix Adding salt increases hydrophobicity of protein
– usually applied to column in high ionic strength solutions.
Eluted by reducing salt, adding detergent or solvent
Hydrophobic matrixes
Often cross linked agarose gels with phenyl groups or
octyl groups attached.
Based on specific interaction between protein and ligand on matrix
Affinity chromatography
protein and ligand on matrix
Biospecific, e.g. enzyme-inhibitor or co-factor, antibody-antigen
Pseudoaffinity ligand with
specificity for particular class of proteins, e.g. some dyes, Protein G
Advantages
High degree of purification possible in single step.
Can separate proteins with very similar chemical
Disadvantages
Can be expensive
Sometimes hard to find good ligand
Affinity chromatography
very similar chemical composition –e.g.
antibodies by using
antigen –affinity chrom.
“Designer” method –less trial and error.
Sometimes hard to displace protein –binds too well to ligand!
Ligand may be destroyed or
leach from column
Kromatográfiás oszlopok
Monoklónális antitest termelő technológiai sor
With permission of Sartorius GmbH
TISZTASÁGI SZINTEK TISZTASÁGI SZINTEK
– Humán injekciós készítmény (kis → nagy dózis) – Humán enterális gyógyszerek
– Állatorvosi gyógyszerek – Élelmiszerek
– Külsőleges gyógyszerek
63
– Kozmetikai készítmények (lemosandó → bőrön maradó) – Technikai, más gyártások alapanyaga
A gyógyszerkönyvi minőség nem mindig a legtisztább, egy kis NaCl ott nem gond, de analitikánál viszont zavarhat
.
1. szint - alap biológiai kockázatú (BSL 1 )
az a biológiai tényező, amely nem képes emberi megbetegedést okozni
2. szint - alap biológiai kockázatú (BSL 2 ) az a biológiai tényező, amely
• képes emberi megbetegedést okozni,
• veszélyt jelenthet
• elterjedése nem valószínű,
• az általa kiváltott betegség eredményesen megelőzhető, vagy kezelése hatásos 3. szint – fertőzésveszélyes (BSL 3 )
A biológiai biztonság 4 szintje - EüM 61/1999 (WHO alapján
3. szint – fertőzésveszélyes (BSL 3 )
súlyos emberi megbetegedéseket képes okozni (akár halálosat),
• komoly veszélyt jelenthet
• szétterjedésének kockázata az emberi közösségben fennállhat,
• általában eredményesen megelőzhető, vagy kezelése hatásos
4. szint - kiemelten fertőzésveszélyes (BSL 4 )
• súlyos emberi megbetegedést okoz, (akár halálosat)
• komoly veszélyt jelent a munkavállaló számára,
• az emberi közösségben való szétterjedésének nagy a kockázata,
• általában nem előzhető meg, vagy nem kezelhető hatásosan
A biológiai biztonság négy szintjére jellemző mikroorganizmusok
I. II. III. IV.
BAKTÉ- RIUMOK
Escherichia coli Lactobacillus sp.
Vibrio cholerae Clostridium tetani Corynebacterium
dyphtheriae
Bacillus anthracis Yersinia pestis
Mycoplasma mycoides
GOMBÁK Saccharomyces Candida albicans
Histoplasma capsulatum
GOMBÁK Saccharomyces cerevisiae
Candida albicans capsulatum Coccidioides
immitis
VÍRUSOK
Vakcinálás-hoz használt
influenza törzs
Hepatitis Influenza
Herpes simplex
HIV
Sárgaláz Creutzfeldt-
Jacob betegség (prion!)
Ebola
Marburg vírus Közép-Eui encephalitis
(agyvelogyulladás) vírus (EU-ban csak
III. szint)